1、样本如何进行稀释？
组织样本是按照1:9关系匀浆。相当于0.5g+4.5mlPBS。样本是血清、血浆按照说明书上的。
2、检测范围：跨度设定的是5个点，最大标准浓度只能设定8个点，为什么试剂盒的检测范围无法满足实际检测范围时？
试剂盒本身对样本种类都要适应，有的样本含有量高，有的低，不可能为每个老师样本实际浓度来设定试剂盒，如果涉及到范围调整，退回重新质控换就行。
3、标准品需要做复孔吗？
建议是做复孔，也就是一个浓度设定2个孔，不建议标准做单孔，如果标准品做的不好，样本哪怕做的最好也没多少意义,空白孔只需要做一个就行。
4、不加样本稀释液行不行，不稀释5倍？还有，显色液A、B不同的试剂是否能通用？
如果样本含量偏低，可以不稀释，但对于细胞培养上清和血浆这2类样本，建议是稀释一下为好（细胞培养上清可能含有血清培养基，稀释是为减少对检测 的影响）。显色液A和显色液B隶属于TMB显色系统。是可以通用的。
5、牛奶样本任何处理？
处理1：
取10ml牛奶放入离心管，加入10ml乙酸乙酯，超声震荡30min，然后4000g离心10min（如两相之间出现乳化层，则将样品瓶放在80℃的水浴中约5min，再离心）移取1ml乙酸乙酯层至另外试管中，60℃氮气流下蒸干，残留物用缓冲液2ml缓冲后备用，前处理过程约需2小时。
处理2：
取10ml牛奶10℃3500G离心10MIN，祛除上层脂肪，取5ml脱脂奶粉加入150微升17.2%亚铁氰化钾，出现沉淀，漩涡混合，然后加入150微升53.5%硫酸锌。再次漩涡混合。15摄氏度3500g离心10分钟，取上层清液用缓冲液1：2稀释待用，前处理过程所需1小时。
6、活性检测试剂盒 里面的标准品的活性是怎么定义的？
单纯的活性定义;是单位时间内催化反应底物的量代表有个酶活，即1个国际单位。通常直接检测酶活的方法学选取比色法，但这个比色法是有明晰的底物才能选用。 酶联法检测酶活的原理是通过活性定标后，通过活性和含量成正比例关系检测酶活，只不过是间接反映酶活的一个方式。
